Содержание
- 2. Лекции – 8 часов Практические занятия – 4 часа Зачет
- 3. In vitro – культивирование объектов «в стекле» (пробирке, колбе, биореакторе) на искусственных питательных средах в стерильных
- 4. «В (на) живом» — внутри организма или на живом организме «В пробирке» — вне живого организма
- 5. Клеточные технологии включают: культивирование растительных клеток; культивирование животных клеток Цель курса «Культуры эукариотических клеток» – знакомство
- 6. Главное требование – соблюдение строгой асептики Все работы по получению культур растительных и животных клеток, их
- 7. Ламинар-боксы
- 8. Второе условие – использование специальных питательных сред Культуральная среда должна обеспечивать все внешние условия, которые клетки
- 9. Способы культивирования растительных клеток Поверхностное культивирование на плотной (агаризованной) питательной среде Глубинное культивирование в жидкой питательной
- 10. Каллус (от лат. callus — толстая кожа, мозоль)
- 11. Каллус - недифференцированные растительные клетки, выращиваемые поверхностным способом на полутвердой питательной среде
- 12. Каллус может образоваться не только в искусственных условиях, но и в природе, например, на раневой поверхности.
- 13. 1. Выбор экспланта Эксплант - фрагмент ткани или органа, используемый для получения первичного каллуса
- 14. Каллусы однодольных растений обычно получают из зародышей, корней, отрезков основания стебля Каллусы двудольных растений могут быть
- 15. Лучшими эксплантами для получения каллуса являются: молодая ткань; ткань ответственная за пролиферацию (меристема) Нежелательно использовать: одревесневшие
- 16. Проращивание простерилизованных семян в асептических условиях дает наиболее пригодный материал для получения каллусов
- 17. 2. Стерилизация растительного материала На поверхности органов растений всегда находится эпифитная микрофлора. Эксплант должен быть освобожден
- 18. АНТИСЕПТИКИ, ИСПОЛЬЗУЕМЫЕ ДЛЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ РАСТИТЕЛЬНЫХ ТКАНЕЙ: соединения, содержащие активный хлор, – 0,5-1% (гипохлорит кальция, гипохлорит натрия,
- 19. ТЕХНИКА ПРОВЕДЕНИЯ СТЕРИЛИЗАЦИИ РАСТИТЕЛЬНОГО МАТЕРИАЛА: Предварительная стерилизация (проводят очистку поверхности путем ее промывания проточной водой; обработки
- 20. 3. Перенос стерильных эксплантов на питательную среду
- 21. 4. Получение первичного каллуса Образование каллуса, в первую очередь, отмечается на раневой поверхности экспланта
- 22. При оптимально подобранной среде первичные каллусы в количестве достаточном для пересадки образуются в течение 3-8 недель
- 23. 5. Субкультивирование (пассирование) Первичный каллус разделяют на части, которые в дальнейшем культивируются отдельно. Следует обратить внимание
- 24. Каллусные культуры различаются по: интенсивности роста; окраске; консистенции и др. Типы каллусных культур:
- 25. Типы каллусных культур: рыхлые (легко распадаются на отдельные клетки); среднеплотные (клетки могут быть отделены друг от
- 26. Направления использования каллусных культур: изучение процессов цитодифференцировки и морфогенеза; биохимические и молекулярно-биологические исследования; изучение механизмов опухолеобразования;
- 27. Суспензионная культура – отдельные клетки или клеточные агрегаты, выращиваемые в жидкой питательной среде во взвешенном состоянии
- 28. Необходимое условие для поддержания суспензионных культур – постоянное перемешивание питательной среды
- 29. удобная модель для молекулярно-биологических и биохимических исследований; (клетки в одинаковой степени доступны для внешнего воздействия, более
- 30. 1. Отбор хорошо растущей каллусной культуры рыхлого типа 2. Инициализация первичной суспензии 2-3 г свежей массы
- 31. Суспензионные культуры состоят из: отдельных клеток; клеточных групп (2-10 клеток); многоклеточных агрегатов (сотни и тысячи клеток).
- 32. А В С С
- 33. слабоагрегированные; (состоят из одиночных клеток (40%) и мелких агрегатов (60%), агрегаты не должны содержать более 10-12
- 34. КУЛЬТУРЫ ПРОТОПЛАСТОВ
- 35. Протопласт – это живое содержимое растительной клетки, лишенное клеточной стенки
- 36. ИСТОЧНИКИ ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТОПЛАСТОВ: изолированные органы растений и их части (листья, корни, лепестки); суспензионная культура; каллусная ткань.
- 37. Основан на механическом разрезании клеточной стенки у клеток в плазмолизированном состоянии Основан на разрушении клеточной стенки
- 38. МЕХАНИЧЕСКИЙ МЕТОД ПОЛУЧЕНИЯ ПРОТОПЛАСТОВ
- 39. Плазмолиз – явление отделения протопласта растительной клетки от клеточной стенки в гипертонической среде
- 40. Схема строения растительной клеточной стенки
- 41. На практике часто используются ферментные препараты, включающие комплекс из нескольких гидролитических ферментов Состав ферментативной смеси должен
- 42. Основные компоненты питательных сред для культивирования растительных клеток: макроэлементы; микроэлементы; источник углерода; витамины; регуляторы роста
- 43. РЕГУЛЯТОРЫ РОСТА РАСТЕНИЙ Содержание регуляторов роста является определяющим фактором для успешного роста культур клеток растений АУКСИНЫ
- 44. АУКСИНЫ β-индолил-3-уксусная кислота (ИУК) β-индолил-3-масляная кислота (ИМК) α-нафтилуксусная кислота (НУК) 2,4-дихлорфеноксиуксусная кислота (2,4-Д)
- 45. АУКСИНЫ НЕОБХОДИМЫ ДЛЯ: стимуляции деления и растяжения клеток каллусных и суспензионных культур; стимуляции образования корней (ризогенеза);
- 46. Стимуляция закладки корней (ризогенеза) у черенков под действием ауксинов
- 47. ИУК способна легко окисляться клетками растений. Ее редко добавляют в среду для культивирования в качестве единственного
- 48. ЦИТОКИНИНЫ Зеатин Изопентениладенин (ИПА) 6-фурфуриладенин (кинетин) 6-бензиламинопурин (6-БАП)
- 49. Зеатин термолабилен, поэтому его нельзя автоклавировать
- 50. ЦИТОКИНИНЫ ВКЛЮЧАЮТ В СОСТАВ СРЕД ДЛЯ: стимуляции клеточных делений в каллусных и суспензионных культурах, в культурах
- 51. ФИЗИЧЕСКИЕ УСЛОВИЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ: условия освещения; Каллусные культуры и клеточные суспензии выращиваются либо темноте, либо под лампами
- 52. Ростовой цикл каллусных и суспензионных культур
- 54. Скачать презентацию