Генетическая инженерия презентация

Содержание

Слайд 2

Аденин (А) Гуанин (Г, G) Тимин (Т) Урацил (У, U) Цитозин (Ц, С)

Аденин (А)

Гуанин (Г, G)

Тимин (Т)

Урацил (У, U)

Цитозин (Ц, С)

Слайд 3

Слайд 4

5’ 3’ 5’ 3’ 5’ 5’ 3’ 3’

5’

3’

5’

3’

5’

5’

3’

3’

Слайд 5

Слайд 6

Репликация ДНК

Репликация ДНК

Слайд 7

Репликация ДНК

Репликация ДНК

Слайд 8

Репликация ДНК

Репликация ДНК

Слайд 9

Слайд 10

ttctcatgtttgacagcttatcatcgataagctttaatgcggtagtttatcacagttaaattgctaacgcagtcaggcaccgtgtatgaaatctaacaatgcgctcatcgtcatcctcggcaccgtcaccctggatgctgtaggcataggcttggttatgccggtactgccgggcctcttgcgggatatcgtccattccgacagcatcgccagtcactatggcgtgctgctagcgctatatgcgttgatgcaatttctatgcgcacccgttctcggagcactgtccgaccgctttggccgccgcccagtcctgctcgcttcgctacttggagccactatcgactacgcgatcatggcgaccacacccgtcctgtggatcctctacgccggacgcatcgtggccggcatcaccggcgccacaggtgcggttgctggcgcctatatcgccgacatcaccgatggggaagatcgggctcgccacttcgggctcatgagcgcttgtttcggcgtgggtatggtggcaggccccgtggccgggggactgttgggcgccatctccttgcatgcaccattccttgcggcggcggtgctcaacggcctcaacctactactgggctgcttcctaatgcaggagtcgcataagggagagcgtcgaccgatgcccttgagagccttcaacccagtcagctccttccggtgggcgcggggcatgactatcgtcgccgcacttatgactgtcttctttatcatgcaactcgtaggacaggtgccggcagcgctctgggtcattttcggcgaggaccgctttcgctggagcgcgacgatgatcggcctgtcgcttgcggtattcggaatcttgcacgccctcgctcaagccttcgtcactggtcccgccaccaaacgtttcggcgagaagcaggccattatcgccggcatggcggccgacgcgctgggctacgtcttgctggcgttcgcgacgcgaggctggatggccttccccattatgattcttctcgcttccggcggcatcgggatgcccgcgttgcaggccatgctgtccaggcaggtagatgacgaccatcagggacagcttcaaggatcgctcgcggctcttaccagcctaacttcgatcactggaccgctgatcgtcacggcgatttatgccgcctcggcgagcacatggaacgggttggcatggattgtaggcgccgccctataccttgtctgcctccccgcgttgcgtcgcggtgcatggagccgggccacctcgacctgaatggaagccggcggcacctcgctaacggattcaccactccaagaattggagccaatcaattcttgcggagaactgtgaatgcgcaaaccaacccttggcagaacatatccatcgcgtccgccatctccagcagccgcacgcggcgcatctcgggcagcgttgggtcctggccacgggtgcgcatgatcgtgctcctgtcgttgaggacccggctaggctggcggggttgccttactggttagcagaatgaatcaccgatacgcgagcgaacgtgaagcgactgctgctgcaaaacgtctgcgacctgagcaacaacatgaatggtcttcggtttccgtgtttcgtaaagtctggaaacgcggaagtcagcgccctgcaccattatgttccggatctgcatcgcaggatgctgctggctaccctgtggaacacctacatctgtattaacgaagcgctggcattgaccctgagtgatttttctctggtcccgccgcatccataccgccagttgtttaccctcacaacgttccagtaaccgggcatgttcatcatcagtaacccgtatcgtgagcatcctctctcgtttcatcggtatcattacccccatgaacagaaatcccccttacacggaggcatcagtgaccaaacaggaaaaaaccgcccttaacatggcccgctttatcagaagccagacattaacgcttctggagaaactcaacgagctggacgcggatgaacaggcagacatctgtgaatcgcttcacgaccacgctgatgagctttaccgcagctgcctcgcgcgtttcggtgatgacggtgaaaacctctgacacatgcagctcccggagacggtcacagcttgtctgtaagcggatgccgggagcagacaagcccgtcagggcgcgtcagcgggtgttggcgggtgtcggggcgcagccatgacccagtcacgtagcgatagcggagtgtatactggcttaactatgcggcatcagagcagattgtactgagagtgcaccatatgcggtgtgaaataccgcacagatgcgtaaggagaaaataccgcatcaggcgctcttccgcttcctcgctcactgactcgctgcgctcggtcgttcggctgcggcgagcggtatcagctcactcaaaggcggtaatacggttatccacagaatcaggggataacgcaggaaagaacatgtgagcaaaaggccagcaaaaggccaggaaccgtaaaaaggccgcgttgctggcgtttttccataggctccgcccccctgacgagcatcacaaaaatcgacgctcaagtcagaggtggcgaaacccgacaggactataaagataccaggcgtttccccctggaagctccctcgtgcgctctcctgttccgaccctgccgcttaccggatacctgtccgcctttctcccttcgggaagcgtggcgctttctcatagctcacgctgtaggtatctcagttcggtgtaggtcgttcgctccaagctgggctgtgtgcacgaaccccccgttcagcccgaccgctgcgccttatccggtaactatcgtcttgagtccaacccggtaagacacgacttatcgccactggcagcagccactggtaacaggattagcagagcgaggtatgtaggcggtgctacagagttcttgaagtggtggcctaactacggctacactagaaggacagtatttggtatctgcgctctgctgaagccagttaccttcggaaaaagagttggtagctcttgatccggcaaacaaaccaccgctggtagcggtggtttttttgtttgcaagcagcagattacgcgcagaaaaaaaggatctcaagaagatcctttgatcttttctacggggtctgacgctcagtggaacgaaaactcacgttaagggattttggtcatgagattatcaaaaaggatcttcacctagatccttttaaattaaaaatgaagttttaaatcaatctaaagtatatatgagtaaacttggtctgacagttaccaatgcttaatcagtgaggcacctatctcagcgatctgtctatttcgttcatccatagttgcctgactccccgtcgtgtagataactacgatacgggagggcttaccatctggccccagtgctgcaatgataccgcgagacccacgctcaccggctccagatttatcagcaataaaccagccagccggaagggccgagcgcagaagtggtcctgcaactttatccgcctccatccagtctattaattgttgccgggaagctagagtaagtagttcgccagttaatagtttgcgcaacgttgttgccattgctgcaggcatcgtggtgtcacgctcgtcgtttggtatggcttcattcagctccggttcccaacgatcaaggcgagttacatgatcccccatgttgtgcaaaaaagcggttagctccttcggtcctccgatcgttgtcagaagtaagttggccgcagtgttatcactcatggttatggcagcactgcataattctcttactgtcatgccatccgtaagatgcttttctgtgactggtgagtactcaaccaagtcattctgagaatagtgtatgcggcgaccgagttgctcttgcccggcgtcaacacgggataataccgcgccacatagcagaactttaaaagtgctcatcattggaaaacgttcttcggggcgaaaactctcaaggatcttaccgctgttgagatccagttcgatgtaacccactcgtgcacccaactgatcttcagcatcttttactttcaccagcgtttctgggtgagcaaaaacaggaaggcaaaatgccgcaaaaaagggaataagggcgacacggaaatgttgaatactcatactcttcctttttcaatattattgaagcatttatcagggttattgtctcatgagcggatacatatttgaatgtatttagaaaaataaacaaataggggttccgcgcacatttccccgaaaagtgccacctgacgtctaagaaaccattattatcatgacattaacctataaaaataggcgtatcacgaggccctttcgtcttcaagaa

ttctcatgtttgacagcttatcatcgataagctttaatgcggtagtttatcacagttaaattgctaacgcagtcaggcaccgtgtatgaaatctaacaatgcgctcatcgtcatcctcggcaccgtcaccctggatgctgtaggcataggcttggttatgccggtactgccgggcctcttgcgggatatcgtccattccgacagcatcgccagtcactatggcgtgctgctagcgctatatgcgttgatgcaatttctatgcgcacccgttctcggagcactgtccgaccgctttggccgccgcccagtcctgctcgcttcgctacttggagccactatcgactacgcgatcatggcgaccacacccgtcctgtggatcctctacgccggacgcatcgtggccggcatcaccggcgccacaggtgcggttgctggcgcctatatcgccgacatcaccgatggggaagatcgggctcgccacttcgggctcatgagcgcttgtttcggcgtgggtatggtggcaggccccgtggccgggggactgttgggcgccatctccttgcatgcaccattccttgcggcggcggtgctcaacggcctcaacctactactgggctgcttcctaatgcaggagtcgcataagggagagcgtcgaccgatgcccttgagagccttcaacccagtcagctccttccggtgggcgcggggcatgactatcgtcgccgcacttatgactgtcttctttatcatgcaactcgtaggacaggtgccggcagcgctctgggtcattttcggcgaggaccgctttcgctggagcgcgacgatgatcggcctgtcgcttgcggtattcggaatcttgcacgccctcgctcaagccttcgtcactggtcccgccaccaaacgtttcggcgagaagcaggccattatcgccggcatggcggccgacgcgctgggctacgtcttgctggcgttcgcgacgcgaggctggatggccttccccattatgattcttctcgcttccggcggcatcgggatgcccgcgttgcaggccatgctgtccaggcaggtagatgacgaccatcagggacagcttcaaggatcgctcgcggctcttaccagcctaacttcgatcactggaccgctgatcgtcacggcgatttatgccgcctcggcgagcacatggaacgggttggcatggattgtaggcgccgccctataccttgtctgcctccccgcgttgcgtcgcggtgcatggagccgggccacctcgacctgaatggaagccggcggcacctcgctaacggattcaccactccaagaattggagccaatcaattcttgcggagaactgtgaatgcgcaaaccaacccttggcagaacatatccatcgcgtccgccatctccagcagccgcacgcggcgcatctcgggcagcgttgggtcctggccacgggtgcgcatgatcgtgctcctgtcgttgaggacccggctaggctggcggggttgccttactggttagcagaatgaatcaccgatacgcgagcgaacgtgaagcgactgctgctgcaaaacgtctgcgacctgagcaacaacatgaatggtcttcggtttccgtgtttcgtaaagtctggaaacgcggaagtcagcgccctgcaccattatgttccggatctgcatcgcaggatgctgctggctaccctgtggaacacctacatctgtattaacgaagcgctggcattgaccctgagtgatttttctctggtcccgccgcatccataccgccagttgtttaccctcacaacgttccagtaaccgggcatgttcatcatcagtaacccgtatcgtgagcatcctctctcgtttcatcggtatcattacccccatgaacagaaatcccccttacacggaggcatcagtgaccaaacaggaaaaaaccgcccttaacatggcccgctttatcagaagccagacattaacgcttctggagaaactcaacgagctggacgcggatgaacaggcagacatctgtgaatcgcttcacgaccacgctgatgagctttaccgcagctgcctcgcgcgtttcggtgatgacggtgaaaacctctgacacatgcagctcccggagacggtcacagcttgtctgtaagcggatgccgggagcagacaagcccgtcagggcgcgtcagcgggtgttggcgggtgtcggggcgcagccatgacccagtcacgtagcgatagcggagtgtatactggcttaactatgcggcatcagagcagattgtactgagagtgcaccatatgcggtgtgaaataccgcacagatgcgtaaggagaaaataccgcatcaggcgctcttccgcttcctcgctcactgactcgctgcgctcggtcgttcggctgcggcgagcggtatcagctcactcaaaggcggtaatacggttatccacagaatcaggggataacgcaggaaagaacatgtgagcaaaaggccagcaaaaggccaggaaccgtaaaaaggccgcgttgctggcgtttttccataggctccgcccccctgacgagcatcacaaaaatcgacgctcaagtcagaggtggcgaaacccgacaggactataaagataccaggcgtttccccctggaagctccctcgtgcgctctcctgttccgaccctgccgcttaccggatacctgtccgcctttctcccttcgggaagcgtggcgctttctcatagctcacgctgtaggtatctcagttcggtgtaggtcgttcgctccaagctgggctgtgtgcacgaaccccccgttcagcccgaccgctgcgccttatccggtaactatcgtcttgagtccaacccggtaagacacgacttatcgccactggcagcagccactggtaacaggattagcagagcgaggtatgtaggcggtgctacagagttcttgaagtggtggcctaactacggctacactagaaggacagtatttggtatctgcgctctgctgaagccagttaccttcggaaaaagagttggtagctcttgatccggcaaacaaaccaccgctggtagcggtggtttttttgtttgcaagcagcagattacgcgcagaaaaaaaggatctcaagaagatcctttgatcttttctacggggtctgacgctcagtggaacgaaaactcacgttaagggattttggtcatgagattatcaaaaaggatcttcacctagatccttttaaattaaaaatgaagttttaaatcaatctaaagtatatatgagtaaacttggtctgacagttaccaatgcttaatcagtgaggcacctatctcagcgatctgtctatttcgttcatccatagttgcctgactccccgtcgtgtagataactacgatacgggagggcttaccatctggccccagtgctgcaatgataccgcgagacccacgctcaccggctccagatttatcagcaataaaccagccagccggaagggccgagcgcagaagtggtcctgcaactttatccgcctccatccagtctattaattgttgccgggaagctagagtaagtagttcgccagttaatagtttgcgcaacgttgttgccattgctgcaggcatcgtggtgtcacgctcgtcgtttggtatggcttcattcagctccggttcccaacgatcaaggcgagttacatgatcccccatgttgtgcaaaaaagcggttagctccttcggtcctccgatcgttgtcagaagtaagttggccgcagtgttatcactcatggttatggcagcactgcataattctcttactgtcatgccatccgtaagatgcttttctgtgactggtgagtactcaaccaagtcattctgagaatagtgtatgcggcgaccgagttgctcttgcccggcgtcaacacgggataataccgcgccacatagcagaactttaaaagtgctcatcattggaaaacgttcttcggggcgaaaactctcaaggatcttaccgctgttgagatccagttcgatgtaacccactcgtgcacccaactgatcttcagcatcttttactttcaccagcgtttctgggtgagcaaaaacaggaaggcaaaatgccgcaaaaaagggaataagggcgacacggaaatgttgaatactcatactcttcctttttcaatattattgaagcatttatcagggttattgtctcatgagcggatacatatttgaatgtatttagaaaaataaacaaataggggttccgcgcacatttccccgaaaagtgccacctgacgtctaagaaaccattattatcatgacattaacctataaaaataggcgtatcacgaggccctttcgtcttcaagaa

Слайд 11

Современная концепция гена ПРОМОТОР СТРУКТУРНАЯ ЧАСТЬ ГЕНА ТЕРМИНАТОР

Современная концепция гена

ПРОМОТОР

СТРУКТУРНАЯ ЧАСТЬ ГЕНА

ТЕРМИНАТОР

Слайд 12

Слайд 13

Слайд 14

Слайд 15

Слайд 16

Слайд 17

Трансляция

Трансляция

Слайд 18

Слайд 19

Слайд 20

Слайд 21

Слайд 22

Слайд 23

Слайд 24

Центральная догма молекулярной биологии ДНК РНК БЕЛОК транскрипция трансляция ЭКСПРЕССИЯ ГЕНА СВОЙСТВА

Центральная догма молекулярной биологии

ДНК

РНК

БЕЛОК

транскрипция

трансляция

ЭКСПРЕССИЯ ГЕНА

СВОЙСТВА

Слайд 25

Биотехнология в современном мире

Биотехнология в современном мире

Слайд 26

Предпосылки возникновения генной инженерии и история развития

Предпосылки возникновения генной инженерии и история развития

Слайд 27

Рекомбинантная ДНК

Рекомбинантная ДНК

Слайд 28

Ферменты, применяемые в генетической инженерии

Ферменты, применяемые в генетической инженерии

Слайд 29

I. РЕСТРИКТАЗЫ (ЕС 3.1.21.) ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ)

I. РЕСТРИКТАЗЫ (ЕС 3.1.21.) ЭНДОНУКЛЕАЗЫ РЕСТРИКЦИИ)

Слайд 30

РЕСТРИКТАЗЫ II типа HindIII (Haemophilus influenzae) 4 – 14 нуклеотидов

РЕСТРИКТАЗЫ II типа
HindIII
(Haemophilus influenzae)

4 – 14 нуклеотидов

Слайд 31

ПАЛИНДРОМЫ А РОЗА УПАЛА НА ЛАПУ АЗОРА По обеим цепям ДНК в одном направлении читаются одинаково

ПАЛИНДРОМЫ

А РОЗА УПАЛА НА ЛАПУ АЗОРА

По обеим цепям ДНК в одном

направлении читаются одинаково
Слайд 32

Рестриктазы в генной инженерии EcoRI (E. coli RY13) NdeI (Neisseria

Рестриктазы в генной инженерии

EcoRI (E. coli RY13)
NdeI (Neisseria denitrificans)
BamHI (Bacillus amyloliquefaciens

H)
BglII (Bacillus globigii)
PmeI (Pseudomonas mendocina)
Слайд 33

Restriction fragment length polymorphism (RFLP-analysis)

Restriction fragment length polymorphism (RFLP-analysis)

Слайд 34

II. ЛИГАЗА (EC 6.5.1.1)

II. ЛИГАЗА (EC 6.5.1.1)

Слайд 35

Механизм действия

Механизм действия

Слайд 36

ДНК-лигаза фага Т4 Единица активности лигазы соответствует количеству фермента, необходимого

ДНК-лигаза фага Т4

Единица активности лигазы соответствует количеству фермента, необходимого для лигирования

фрагментов ДНК фага λ (300 мкг/мл), полученных рестрикцией ферментом HindIII, за 30 минут при температуре 160С.
Слайд 37

Лигирование по липким и тупым концам

Лигирование по липким и тупым концам

Слайд 38

V. Нуклеазы – гидролитические ферменты, расщепляющие фосфодиэфирные связи в нуклеиновых кислотах

V. Нуклеазы – гидролитические ферменты, расщепляющие фосфодиэфирные связи в нуклеиновых кислотах

Слайд 39

Нуклеазы Экзонуклеазы Эндонуклеазы Экзонуклеаза III E. coli (катализирует последовательное отщепление

Нуклеазы

Экзонуклеазы

Эндонуклеазы


Экзонуклеаза III E. coli
(катализирует последовательное отщепление нуклеотидов

из дцДНК в направлении 3’----5’ )
Экзонуклеаза фага λ
(катализирует последовательное отщепление 5’-мононуклеотидов при наличии фосфатных групп)
Экзонуклеаза Bal31 (Alteromonus espejina).
(катализирует последовательное отщепление нуклеотидов с обоих концов)


Нуклеаза S1 (Aspergillus orizae)
Нуклеаза Mung Bean
Нуклеаза P1 (Penicillium citrinum )
(распознает и расщепляет одноцепочечные участки в одноцепочечных разрывах)
РНКазаА (расщепляет фосфодиэфирные связи, образованные пиримидиновыми нуклеотидами)
ДНКазаI

Слайд 40

V. ДНК-полимеразы

V. ДНК-полимеразы

Слайд 41

Репликация ДНК

Репликация ДНК

Слайд 42

матрица праймер Фрагмент Кленова ДНК-полимераза фага Т4 ДНК полимераза Thermus aquaticus

матрица

праймер

Фрагмент Кленова

ДНК-полимераза
фага Т4

ДНК полимераза
Thermus aquaticus

Слайд 43

ДНК-полимеразы термофильных архебактерий

ДНК-полимеразы термофильных архебактерий

Слайд 44

История открытия Апрель 1983 г – идея ПЦР Декабрь 1983

История открытия

Апрель 1983 г – идея ПЦР
Декабрь 1983 г – осуществление

ПЦР
1993 г – Нобелевская премия по химии
Слайд 45

Что такое ПЦР? По сути, это упрощенная версия репликации бактерий,

Что такое ПЦР?

По сути, это упрощенная версия репликации бактерий, при которой

возрастает количество копий специфической последовательности ДНК. Их называют ПЦР-продуктами или ампликонами.
Слайд 46

Что такое ПЦР?

Что такое ПЦР?

Слайд 47

Сравнение ПЦР и репликации in vivo (1)

Сравнение ПЦР и репликации in vivo (1)

Слайд 48

Сравнение ПЦР и репликации in vivo (2)

Сравнение ПЦР и репликации in vivo (2)

Слайд 49

Компоненты реакции ПЦР Master Mix (MM)

Компоненты реакции ПЦР

Master Mix (MM)

Слайд 50

72 - 75 0C амплификация 90 - 99 0C денатурация

72 - 75 0C амплификация

90 - 99 0C
денатурация

Temperature, 0C

40 – 70

0C отжиг

Рабочий цикл ПЦР

90 - 99 0C
денатурация

Слайд 51

Денатурация 3’ 5’ 5’ 3’ 5’ 3’ 3’ 5’

Денатурация

3’

5’

5’

3’

5’

3’

3’

5’

Слайд 52

Отжиг праймеров 3’ 5’ 5’ 3’ • Праймеры комплементарно связываются

Отжиг праймеров

3’

5’

5’

3’

• Праймеры комплементарно связываются с ДНК,
согласно их температуре плавления
• ДНК-полимераза связывается

с дцДНК фрагментом

Отжиг при температуре 40 – 70°C

Слайд 53

Температура плавления (T melting, Tm) Под температурой плавления понимают температуру,

Температура плавления (T melting, Tm)

Под температурой плавления понимают температуру, при которой

половина молекул гибридизована (находится в двуцепочечном состоянии), а половина находится в растворе. Данный параметр является характеристикой олигонуклеотида для конкретных условий среды.

Tm (0С)= 2 (А+Т) + 4 (Г+Ц)
При длине праймера < 20 нуклеотидов
Tm (0С)=81.5+16,6lgI +0.41(%Г+%Ц)-500/N
Tm (0С)= 81.5+0.41(%Г+%Ц)-675/N
При длине праймера >20 нуклеотидов
Oligo calculator

Слайд 54

Расчет оптимальной температуры денатурации ампликона Td=Tm+3-40С

Расчет оптимальной температуры денатурации ампликона

Td=Tm+3-40С

Слайд 55

Температура отжига (T annealing, Ta) Ta=Tm – 50С (по Ребрикову)

Температура отжига (T annealing, Ta)

Ta=Tm – 50С (по Ребрикову)
Ta=Tm – 100С

(по Патрушеву)

Под температурой плавления понимают температуру, соответствующего режима в программе амплификации, оптимальную с точки зрения эффективности, специфичности или других параметров ПЦР.
Если температура будет ниже оптимальной, то праймер будет отжигаться неспецифически, что приведет к получению побочных продуктов реакции.
Если температура будет выше оптимальной, то продукта будет мало (зато высокая специфичность), либо не будет вообще.
Зависит от температуры плавления:

Зависит от вида полимеразы:

Ta=Tm±100С

Слайд 56

Задача №1 Определите температуры плавления и отжига следующего олигонуклеотида: 5’

Задача №1

Определите температуры плавления и отжига следующего олигонуклеотида:
5’ GGCATTTAGCTTAGGC 3’

Решение:
N=16: А=3,

Т=5, Г=5, Ц=3
Tm= 2 (А+Т) + 4 (Г+Ц) = 2(3+5) + 4(5+3) = 480С
Ta = 48 – 5 = 430С
Слайд 57

Задача №2 Определите температуры плавления и отжига следующего олигонуклеотида: 5’

Задача №2

Определите температуры плавления и отжига следующего олигонуклеотида:
5’ GGCATTTAGCTTAGGCTTAAGGCGGGAG 3’

Решение:
N=28: А=6,

Т=7, Г=11, Ц=4, %Г=11*100/28 = 39.3, %Ц = 4*100/28 = 14.3
Tm (0С)= 81.5+0.41(%Г+%Ц)-675/N = 81.5 + 0.41(39.3+14.3) – 675/28 = 79.4
Ta = 79.4 – 10 = 69.40С
Tm= 2(6+7) + 4(11+4) = 860С
Слайд 58

Термодинамический расчет температуры отжига

Термодинамический расчет температуры отжига

Слайд 59

Конструирование (дизайн) праймеров: При подборе праймеров зачастую удобно использовать програмное

Конструирование (дизайн) праймеров:

При подборе праймеров зачастую удобно использовать програмное обеспечение,

упрощающее поиск подходящих регионов или даже выбирающее «оптимальную пару праймеров». Однако наиболее точно праймеры подбираются (проверяются) вручную по следующим параметрам:
Длина 18 – 24 нуклеотида;
Четыре и более 3’-концевых нуклеотида не должны быть комплементарны самому праймеру, праймеру в паре;
Температура отжига должна лежать в диапазоне 50 – 65 0С;
Температура обоих праймеров должна быть сходной;
На 3’-конце праймера должны находиться тугоплавкие нуклеотиды Г или С
Слайд 60

Эффективность ПЦР Y=X×2n

Эффективность ПЦР

Y=X×2n

Слайд 61

ПЦР в реальном времени

ПЦР в реальном времени

Слайд 62

2a. Фильтр возбуждения 2b. Фильтр эмиссии 1. Источник излучения 4. образцы 3. Усилитель 5. Полупроводниковый детектор

2a. Фильтр
возбуждения

2b. Фильтр эмиссии

1. Источник излучения

4. образцы

3. Усилитель

5. Полупроводниковый детектор

Слайд 63

Amplification Plot of real-time PCR DNA copy number (log) PCR cycle (Ct)

Amplification Plot of real-time PCR

DNA copy number (log)

PCR cycle (Ct)

Слайд 64

Секвенирование по Сэнглеру В 1977 г. автор способ ферментативного секвенирования,

Секвенирование по Сэнглеру

В 1977 г. автор способ ферментативного секвенирования, получивший название

метода терминирующих аналогов трифосфатов. В качестве праймеров использовали синтетические олигонуклеотиды. Специфическую терминацию синтеза обеспечивали добавлением в реакционную смесь помимо четырех типов dNTP еще и одного из 2',3'-дидезоксинуклеозидтрифосфатов (ddATP, ddTTP, ddCTP или ddGTP), который способен включаться в растущую цепь ДНК, но не способен обеспечивать дальнейшее копирование из-за отсутствия 3'-ОН группы. Отношение концентраций dNTP/ddNTP авторы подбирали экспериментально, так, чтобы в итоге получить набор копий ДНК различной длины. Таким образом, для определения первичной структуры исследуемого фрагмента ДНК требовалось провести четыре реакции копирования: по одному типу терминаторов в каждой из реакций. После этого полученные продукты разгонялись в полиакриламидном геле на соседних дорожках и по расположению полос определялась последовательность нуклеотидов.
Слайд 65

Секвенирование ДНК Использование электрофореза в капиллярах, автоматическое считывание флуоресценции на границе выхода из геля

Секвенирование ДНК

Использование электрофореза в капиллярах, автоматическое считывание флуоресценции на границе выхода

из геля
Слайд 66

Обратная транскриптаза (КФ 2.7.7.49) (ревертаза)

Обратная транскриптаза (КФ 2.7.7.49) (ревертаза)

Слайд 67

Функции обратных транскриптаз Ферменты катализируют синтез ДНК на матрице РНК

Функции обратных транскриптаз

Ферменты катализируют синтез ДНК на матрице РНК в процессе

обратной транскрипции.
Обладает:
РНК-зависимой ДНК (РНК)-полимеразной активностью;
Активностью РНКазы H, ДНК-эндонуклеазной активностью ;
ДНК-зависимой ДНК-полимеразной активностью.
Слайд 68

Обратные транскриптазы в генной инженерии Обратная транскриптаза вируса миелобластоза птиц

Обратные транскриптазы в генной инженерии

Обратная транскриптаза вируса миелобластоза птиц (Avian Myeloblastosis

Virus, AMV)
Помимо 5’- 3’ полимеразной активности, обладает 5’- 3’ и 3’-5’ экзорибонуклеазными активностями. Способна расщеплять ДНК-РНК гибриды по процессивному механизму, т.е. обладает активностью РНКазы Н.
Обратная транскриптаза вируса лейкоза мышей Молони (Moloney Murine Leukemia Virus, MMLV)
Обладает ДНК- и РНК-полимеразной активностью. Активность РНКазы Н выражена значительно ниже.
ПРИМЕНЕНИЕ РЕВЕРТАЗ
Получение молекул кДНК для изучения функций генов и их продуктов;
Экспрессионный анализ;
Создание геномных библиотек;
Введение радиоактивной метки в ДНК.
Слайд 69

Процессинг РНК

Процессинг РНК

Слайд 70

Реакция ОТ Рабочая температура: 370С; Время реакции: 1 час; Ионы

Реакция ОТ
Рабочая температура:
370С;
Время реакции:
1 час;
Ионы магния;
Чистая матрица
(обработка ДНКазой);
В реакцию добавить
ингибиторы РНКаз

Слайд 71

ДНК-полимераза Tth Обратная транскрипция и ПЦР в одной пробирке !!!

ДНК-полимераза Tth

Обратная транскрипция и ПЦР в одной пробирке !!!

Слайд 72

ВЕКТОРЫ

ВЕКТОРЫ

Слайд 73

Что такое вектор? Вектор – молекула ДНК, используемая в генетической

Что такое вектор?

Вектор – молекула ДНК, используемая в генетической инженерии для

передачи генетического материала другой клетке.

Свойства векторов

Способность к автономной репликации;
Емкость вектора;
Наличие маркерного гена.

Слайд 74

Свойства векторов По функциям: Векторы для клонирования Векторы для экспрессии

Свойства векторов

По функциям:
Векторы для клонирования
Векторы для экспрессии
Векторы для трансформации
По месту применения:
Бактериальные
Эукариотические
Челночные

(бинарные) (shuttle).
Слайд 75

Плазмидная ДНК бактерий Способность к автономной репликации; (ориджин репликации, ori)

Плазмидная ДНК бактерий

Способность к автономной репликации;
(ориджин репликации, ori)
Емкость вектора;
(до размеров самой

плазмиды, но обычно до 70%, сайты рестрикции)
Наличие маркерного гена.
(R-плазмиды)
Слайд 76

Локусы контроля репликации плазмидной ДНК

Локусы контроля репликации плазмидной ДНК

Слайд 77

Создание плазмид с повышенной копийностью _____________________________________________ Плазмида Ori Копийность Классификация

Создание плазмид с повышенной копийностью

_____________________________________________
Плазмида Ori Копийность Классификация
_____________________________________________
pUC pMB1* 500 – 700 высококопийная
pBluescript ColE1 300

- 500 высококопийная
pGEM pMB1* 300 - 700 высококопийная
pTZ pMB1* > 1000 высококопийная
pBR322 pMB1* 15 - 20 низкокопийная
pACYC p15A 10 - 12 низкокопийная
ColE1 ColE1 15 – 20 низкокопийная
pSC101 pSC101 ~5 очень низкокопийная
________________________________________________________________________
Слайд 78

Селективные маркеры

Селективные маркеры

Слайд 79

Емкость плазмиды

Емкость плазмиды

Слайд 80

Отличие векторов и плазмид Уникальные сайты, емкость плазмид до 10 kb!!!

Отличие векторов и плазмид

Уникальные сайты, емкость плазмид до 10 kb!!!

Слайд 81

Полилинкер (MCS) небольшой, искусственно синтезированный фрагмент ДНК, который представляет собой

Полилинкер (MCS) небольшой, искусственно синтезированный фрагмент ДНК, который представляет собой последовательность, содержащую

сайты рестрикции для наиболее используемых ферментов
Слайд 82

Серии векторов

Серии векторов

Слайд 83

Бело-голубая селекция

Бело-голубая селекция

Слайд 84

Бело-голубая селекция ИПТГ – индуктор lac-оперона X-Gal – хромогенный субстрат

Бело-голубая селекция

ИПТГ – индуктор lac-оперона
X-Gal – хромогенный субстрат

Слайд 85

Космиды Это гибридный тип векторов, совмещающий в себе свойства плазмиды

Космиды

Это гибридный тип векторов, совмещающий в себе свойства плазмиды и

фага λ. Они конструируются на основе репликона плазмиды и содержат cos-сайты. Предназначены для больших фрагментов ДНК (35 – 45 kb).
Слайд 86

Фазмиды (фасмиды, фагмиды) Это гибридный тип векторов, совмещающий в себе

Фазмиды (фасмиды, фагмиды)

Это гибридный тип векторов, совмещающий в себе свойства плазмиды

и нитчатых фагов (f1, M13)
Слайд 87

Искусственные хромосомы

Искусственные хромосомы

Слайд 88

Искусственные хромосомы дрожжей (yeast artificial chromosomes, YACs) Cen4 – центромера

Искусственные хромосомы дрожжей (yeast artificial chromosomes, YACs)

Cen4 – центромера дрожжей;
ORI –

ориджин бактерий;
Telomere – теломерные последовательности;
ARS1 – автономная реплицирующаяся последовательность
Cloning site – полилинкер
AmpR, trp1, ura3, his3 – селективные маркеры
Sup4 – красно-белая селекция
Применение:
Клонирование больших фрагментов генома: 100 – 2000 kbp (1000 kbp)
Слайд 89

Создание геномных библиотек

Создание геномных библиотек

Слайд 90

Геномные библиотеки (банки генов) Геномная библиотека – фрагменты генома, клонированные

Геномные библиотеки (банки генов)

Геномная библиотека – фрагменты генома, клонированные в фаге

λ (фаговые библиотеки) или в BAC/PAC/YAC векторах (BAC/PAC/YAC библиотеки)

Геномная библиотека – совокупность фрагментов, составляющих целый геном.

Геномная библиотека позволяет работать не с целым геномом, а его конкретными участками.

Слайд 91

Принцип конструирования геномных библиотек

Принцип конструирования геномных библиотек

Слайд 92

Перекрывающиеся последовательности Перекрытие – в скольких фрагментах у вас будет 1 участок ДНК

Перекрывающиеся последовательности

Перекрытие – в скольких фрагментах у вас будет 1

участок ДНК
Слайд 93

II Этап. Создание геномной библиотеки Левое и правое плечо фага с адапторами HindIII

II Этап. Создание геномной библиотеки

Левое и правое плечо фага с адапторами

HindIII
Слайд 94

III Этап. Клонирование геномной библиотеки

III Этап. Клонирование геномной библиотеки

Слайд 95

Расчет количества клонов, необходимых для получения геномной библиотеки Где N

Расчет количества клонов, необходимых для получения геномной библиотеки

Где N – количество

клонов, P – вероятность того, что клонотека содержит требуемую последовательность, f – доля генома, в среднем, представленная в каждом клоне
Слайд 96

BAC, PAC библиотеки Сложно выделять ДНК (фрагментация редкощепящими рестриктазами или не режут вообще)

BAC, PAC библиотеки

Сложно выделять ДНК (фрагментация редкощепящими рестриктазами или не режут

вообще)
Слайд 97

Поиск (скрининг) клонов в библиотеке Гибридизация – отжиг цепи ДНК на комплементарной ей цепи ДНК

Поиск (скрининг) клонов в библиотеке

Гибридизация – отжиг цепи ДНК на комплементарной

ей цепи ДНК
Слайд 98

Принцип проведения скрининга

Принцип проведения скрининга

Слайд 99

Гибридизация: получение реплики Чашка Петри Нитроцеллюлозная (нейлоновая) мембрана

Гибридизация: получение реплики

Чашка Петри

Нитроцеллюлозная
(нейлоновая) мембрана

Слайд 100

Блоттинг (по Саузерну)

Блоттинг (по Саузерну)

Слайд 101

Прогулка по хромосомам

Прогулка по хромосомам

Слайд 102

Библиотеки кДНК

Библиотеки кДНК

Слайд 103

ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ

ТРАНСГЕННЫЕ РАСТЕНИЯ

Слайд 104

50-е годы XX века Получение культур in vitro - растений «в пробирке»

50-е годы XX века

Получение культур in vitro
- растений «в пробирке»

Слайд 105

1983 год, первое трансгенное растение Растение табака, устойчивое к канамицину

1983 год, первое трансгенное растение

Растение табака, устойчивое к канамицину

Слайд 106

1990 год, первое трансгенное растение, пошедшее «в поля» Растения хлопка, устойчивые к насекомым

1990 год, первое трансгенное растение, пошедшее «в поля»

Растения хлопка, устойчивые к

насекомым
Слайд 107

1994 год, томаты «flavr savr» Устойчивость к бактериальным гнилям

1994 год, томаты «flavr savr»

Устойчивость к
бактериальным гнилям

Слайд 108

1995 год, Monsanto Соя, устойчивая к гербицидам

1995 год, Monsanto

Соя, устойчивая к гербицидам

Слайд 109

Картофель, устойчивый к колородскому жуку Кукуруза, устойчивая к кукурузной огневке,

Картофель, устойчивый к колородскому жуку
Кукуруза, устойчивая к кукурузной огневке, гербицидам

Папайя, устойчивая к вирусу кольцевой пятнистности
Слайд 110

Suntory – голубая трансгенная роза (дигидрокверцитин 5’-гидролаза)

Suntory – голубая трансгенная роза (дигидрокверцитин 5’-гидролаза)

Слайд 111

- трансформация клеток Как получают трансгенные растения? - Получение культур и регенерация культур in vitro

- трансформация клеток

Как получают трансгенные растения?

- Получение культур

и регенерация культур in vitro
Слайд 112

Агробактериальная трансформация Agrobacterium tumefaciens (A. tumefaciens)

Агробактериальная трансформация

Agrobacterium tumefaciens
(A. tumefaciens)

Слайд 113

A. tumefaciens вызывает болезнь корончатых галлов

A. tumefaciens вызывает болезнь корончатых галлов

Слайд 114

Корончатые галлы состоят из дедифференцированных клеток

Корончатые галлы состоят из

дедифференцированных клеток

Слайд 115

A. tumefaciens – плазмидосодержащая бактерия

A. tumefaciens – плазмидосодержащая бактерия

Слайд 116

Опины – источники азота и энергии агробактерии Нопалины Октопины Агропины

Опины – источники азота и энергии агробактерии

Нопалины

Октопины

Агропины

Слайд 117

(локус shi) (локус roi)

(локус shi)

(локус roi)

Слайд 118

Агробактериальная трансформация

Агробактериальная трансформация

Слайд 119

клеточная стенка растения оболочка клетки агробактерии Vir A сигнальные молекулы

клеточная стенка растения

оболочка клетки агробактерии

Vir A

сигнальные молекулы растения

P

Vir G

Vir G +

P

область vir генов

Vir E2
Vir D1
Vir D2
Vir C1
Vir B
Vir D4

Т-ДНК

LB

RB

ядро

Т-ДНК

Слайд 120

Влияние растительных гормонов на клетку

Влияние растительных гормонов на клетку

Слайд 121

Слайд 122

Оценка устойчивости трансгенных линий сахарной свеклы к действию гербицида «Баста»

Оценка устойчивости трансгенных линий сахарной свеклы к действию гербицида «Баста»

КОНТРОЛЬ

ТРАНСГЕННЫЕ ЛИНИИ

ТРАНСГЕННЫЕ
ЛИНИИ

ТРАНСГЕННЫЕ

ЛИНИИ

КОНТРОЛЬ

КОНТРОЛЬ

ТРАНСГЕННЫЕ
ЛИНИИ

Слайд 123

Получение трансгенного картофеля

Получение трансгенного картофеля

Слайд 124

Участок, зарегистрированный МВК ГИД, Краснодар, ВНИИБЗР Контрольные растения ГМ сорт Невский ГМ сорт Луговской

Участок, зарегистрированный МВК ГИД, Краснодар, ВНИИБЗР

Контрольные растения

ГМ сорт
Невский

ГМ сорт Луговской

Слайд 125

Контрольные растения, 150 mM NaCl Трансгенные растения, 150 mM NaCl

Контрольные растения, 150 mM NaCl

Трансгенные растения, 150 mM NaCl

Контрольные растения
Трансгенные

растения

NaCl 25 mM 125 mM 175 mM

Рост контрольных и трансгенных растений на различных концентрациях NaCl в среде

Прорастание семян при различной концентрации NaCl в среде

Растения табака, несущие ген RPP H+пирофосфатазы Rpodospirillum rubrum, обуславливающий устойчивость к засолению

Слайд 126

РИС (Oryza sativa ) Основной пищевой продукт, производимый в мире Низкое содержание витамина А и железа

РИС (Oryza sativa )

Основной пищевой продукт, производимый в мире
Низкое содержание витамина

А и железа
Слайд 127

“Золотой” рис с повышенным содержанием β -каротина

“Золотой” рис с повышенным содержанием β -каротина

Слайд 128

Получение лекарственных препаратов в растениях РАСТЕНИЯ – БИОФАРМАЦЕВТИКИ

Получение лекарственных препаратов в растениях

РАСТЕНИЯ –
БИОФАРМАЦЕВТИКИ

Имя файла: Генетическая-инженерия.pptx
Количество просмотров: 64
Количество скачиваний: 0