Слайд 2
![Фотосинтетическое фосфорилирование (ФФ) ФФ – это синтез молекулы АТФ за](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-1.jpg)
Фотосинтетическое фосфорилирование (ФФ)
ФФ – это синтез молекулы АТФ за счет энергии
трансмембранного потенциала (ΔμН+) тилакоидной мембраны.
ΔμН+
АДФ + Фн АТФ + Н2О
Слайд 3
![Типы фотофосфорилирования Нециклическое фотофосфорилирование. 2АДФ + Фн + 2НАДФ+ +](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-2.jpg)
Типы фотофосфорилирования
Нециклическое фотофосфорилирование.
2АДФ + Фн + 2НАДФ+ + 2 Н2О 2АТФ
+ + О2 + 2НАДФН
Осуществляют фотосистемы ФСI и ФСII.
2. Циклическое фотофосфорилирование
АДФ + Фн АТФ + Н2О
Осуществляет ФСI.
Слайд 4
![Механизм фотосинтетического фосфорилирования](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-3.jpg)
Механизм фотосинтетического фосфорилирования
Слайд 5
![Хемио-осмотическая гипотеза (Митчелл, Ягендорф)](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-4.jpg)
Хемио-осмотическая гипотеза (Митчелл, Ягендорф)
Слайд 6
![Структура АТФ-синтазы](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-5.jpg)
Слайд 7
![Биохимия фотосинтеза Сущность темновой фазы фотосинтеза заключается в трансформации макроэргической](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-6.jpg)
Биохимия фотосинтеза
Сущность темновой фазы фотосинтеза заключается в трансформации макроэргической связи АТФ
и НАДФН в стабильную форму энергии – органическую связь.
СО2 + АТФ + НАДФН
[СН2О] + АДФ + Фн + НАДФ
Слайд 8
![Цикл Кальвина В 1957 году Кальвин предложил биохимический механизм превращения](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-7.jpg)
Цикл Кальвина
В 1957 году Кальвин предложил биохимический механизм превращения СО2 в
фосфоглицериновый альдегид (ФГА).
1 сек
*СО2 СН2ОН-СНОН-*СООН
ФГК
Это С3-путь или восстановительный пентозофосфатный путь (ВПФП).
Слайд 9
![Методы Кальвина В лаборатории Кальвина, Басхэма и Бенсона впервые использовали](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-8.jpg)
Методы Кальвина
В лаборатории Кальвина, Басхэма и Бенсона впервые использовали методы:
1.
Для фотосинтеза использовали *СО2 с радиоактивным углеродом – С14.
2. Фиксация растительного образца кипящим этиловым спиртом.
3. Бумажная хроматография.
4. Радиоавтография, необходимая для идентификации изотопных молекул.
5. Фотостатированная камера (фитотрон).
Слайд 10
![Цикл Кальвина Включение СО2 в цикл 1) Активирование первичного акцептора](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-9.jpg)
Цикл Кальвина
Включение СО2 в цикл
1) Активирование первичного акцептора
(рибулозомонофосфат)
РМФ + АТФ →
РБФ + АДФ
РБФ – рибулозо-1,5-бисфосфат
Слайд 11
![2). Карбоксилирование рибулозобисфосфата](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-10.jpg)
2). Карбоксилирование рибулозобисфосфата
Слайд 12
![Свойства рибулозобисфосфаткарбоксилазы РБФ-карбоксилаза (Rubisco) КФ 4.1.1.39 – самый распространенный белок](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-11.jpg)
Свойства рибулозобисфосфаткарбоксилазы
РБФ-карбоксилаза (Rubisco)
КФ 4.1.1.39 – самый распространенный белок биосферы:
а)
50% от общего количества белков в хлоропласте;
б) 70% составляют растительные белки в биосфере;
в) 20% всех белков биосферы являются РБФ-карбоксилазой, т.е. каждый пятый белок в природе это Rubisco.
Слайд 13
![Свойства Rubisco 2. Фермент двойного кодирования. Rubisco имеет молекулярную массу](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-12.jpg)
Свойства Rubisco
2. Фермент двойного кодирования.
Rubisco имеет молекулярную массу 550 кДа. Состоит
из 8 больших (L) c Mr 51-58 кДа
и 8 малых (S) с Mr 12-18 кДа.
Формула комплекса L8-S8.
Большие субъединицы кодируются хлоропластной ДНК (rbcL), малые ядерные ДНК (rbcS).
Слайд 14
![Свойства Rubisco Сборка белка происходит в хлоропластах при участии белка](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-13.jpg)
Свойства Rubisco
Сборка белка происходит в хлоропластах при участии белка шаперона (Hsc60),
который кодируется в ядре. Для сборки функционально активного фермента необходима четкая регуляция работы двух геномов (ядерного и хлоропластного).
Каталитический центр фермента формируют аминокислотные остатки C- и N-концов полипептидов двух больших субъединиц. У Rubisco высших растений имеется 8 каталитических центров.
Слайд 15
![Свойства Rubisco Димеры больших субъединиц каталитически активны и в отсутствие](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-14.jpg)
Свойства Rubisco
Димеры больших субъединиц каталитически активны и в отсутствие малых субъединиц.
Малые субъединицы играют регуляторную роль.
3. Бифункциональность РБФ-карбоксилазы. Фермент катализирует карбоксилазную активность (функционирование ВПФП) и оксигеназную (функционирование фотодыхательного метаболизма).
Слайд 16
![Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-15.jpg)
Рибулозо-1,5-бисфосфаткарбоксилаза
Слайд 17
![II. Фаза восстановления Осуществляется с помощью двух реакций: А) активирование](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-16.jpg)
II. Фаза восстановления
Осуществляется с помощью двух реакций:
А) активирование 3ФГК:
3ФГК
+ АТФ → 1,3ФГК + АДФ (фермент киназа)
Б) восстановление ФГК до ФГА
1,3ФГК + НАДФН → ФГА + НАДФ+
(фермент глицероальдегиддегидрогеназа)
Слайд 18
![III. Регенерация первичного акцептора Общее уравнение образования ФГА 3 РМФ](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-17.jpg)
III. Регенерация первичного акцептора
Общее уравнение образования ФГА
3 РМФ + 9
АТФ + 6 НАДФН + 3 СО2 →
6 ФГА + 9 АДФ + 9 Фн + 6 НАДФ
5 ФГА 1 ФГА
на регенерацию на синтез оргвеществ
первичного
акцептора
Слайд 19
![III.Регенерация первичного акцептора С3 – фосфоглицериновый альдегид (ФГА) С6 –](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-18.jpg)
III.Регенерация первичного акцептора
С3 – фосфоглицериновый альдегид (ФГА)
С6 – фруктозо-1,6-БФ
С4 – эритрозо-4-Ф
С7
– седогептулоза-7-Ф
С5 – рибулозомонофосфат
Слайд 20
![Фотодыхание Фотодыхание – это светоиндуцируемое выделение углекислого газа зелеными листьями](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-19.jpg)
Фотодыхание
Фотодыхание – это светоиндуцируемое выделение углекислого газа зелеными листьями растений.
Фотодыхание
обнаружено в 1965 году. Его осуществляет комплекс органоидов: хлоропласт, пероксисома, митохондрия.
Слайд 21
![](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-20.jpg)
Слайд 22
![Причины фотодыхания 1. Наличие оксигеназной функции у рибулозобисфосфаткарбоксилазы. 2. Высокая](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-21.jpg)
Причины фотодыхания
1. Наличие оксигеназной функции у рибулозобисфосфаткарбоксилазы.
2. Высокая концентрация кислорода в
атмосфере, составляющая 21%.
3. Значительные количества кислорода, проникающие в ткань растений, индуцируют оксигеназную функцию Rubisco.
Слайд 23
![Значение фотодыхания На фотодыхательный метаболизм у С3-растений тратится до 55%](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-22.jpg)
Значение фотодыхания
На фотодыхательный метаболизм у С3-растений тратится до 55% продуктов фотосинтеза.
1.
Фотодыхание выступает как футильный цикл, обеспечивающий защиту органических веществ (ДНК-белков) от фотодеструкции.
2. Образование протеиногенных аминокислот (глицина и серина).
3. Обеспечивает синтез сахарозы (с небольшой скоростью).
Слайд 24
![Значение фотодыхания Фотодыхание – это «расплата» растений за созданную ими](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-23.jpg)
Значение фотодыхания
Фотодыхание – это «расплата» растений за созданную ими кислородную атмосферу.
Потеря 40-50% продуктов фотосинтеза является необходимой «данью» для выживания в условиях кислородного стресса.
Слайд 25
![Цикл Хэтча-Слэйка Карпилов И.С. в 1963 году обнаружил включение 14СО2](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-24.jpg)
Цикл Хэтча-Слэйка
Карпилов И.С. в 1963 году обнаружил включение 14СО2 в яблочную
кислоту в листьях кукурузы.
Коржик в 1964 году установил в сахарном тростнике функционирование ФЕП-карбоксилазы.
Хэтч и Слэйк в 1969 году создали цикл ассимиляции СО2 по С4-типу фотосинтеза.
Слайд 26
![Анатомия листа у С4 - растений](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-25.jpg)
Анатомия листа у С4 - растений
Слайд 27
![Анатомия листа у С4 - растений Для С4-растений характерна кранц-анатомия](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-26.jpg)
Анатомия листа у С4 - растений
Для С4-растений характерна кранц-анатомия листа.
Внутреннее
кольцо (обкладка) изолировано клетками мезофилла.
В клетках обкладки локализован цикл Кальвина.
В мезофильной ткани протекает специфический С4-путь ассимиляции углерода.
Слайд 28
![Биохимия цикла Хэтча-Слейка 1 – ФЕП-карбоксилаза, 2 – малатдегидрогеназа (НАД-зависимая),](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-27.jpg)
Биохимия цикла Хэтча-Слейка
1 – ФЕП-карбоксилаза, 2 – малатдегидрогеназа (НАД-зависимая), 3 –
малатдегидрогеназа (декарбоксилир.), 4 - пируваткиназа
Слайд 29
![Физиологическая роль цикла Хэтча-Слэйка Физиологическое значение цикла: 1) Увеличение концентрации](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-28.jpg)
Физиологическая роль цикла Хэтча-Слэйка
Физиологическое значение цикла:
1) Увеличение концентрации СО2 в клетках
обкладки.
Используется новый фермент ФЕП-карбоксилаза, обладающий высоким сродством к углекислому газу.
2) Рибулозо-бисфосфат-карбоксилаза «спрятана» в клетках обкладки, где концентрация кислорода минимальна.
Фотодыхание отсутствует или слабо выражено.
Слайд 30
![Физиологическая роль цикла Хэтча-Слэйка 3) ФЕП-карбоксилаза является уникальным ферментом, обладающим](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-29.jpg)
Физиологическая роль цикла Хэтча-Слэйка
3) ФЕП-карбоксилаза является уникальным ферментом, обладающим большим сродством
к СО2, что имеет важное значение в условиях низкой концентрации СО2 в атмосфере (0,035 %).
4) ФЕП-карбоксилаза является термофильным ферментом (оптимум t = 30-40оС, что обеспечивает эффективное карбоксилирование при высоких температурах.
Слайд 31
![Эволюция фотосинтеза Причины эволюции в последние 600 млн. лет обусловлены](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-30.jpg)
Эволюция фотосинтеза
Причины эволюции в последние 600 млн. лет обусловлены резким изменением
факторов внешней среды.
1. Концентрация кислорода выросла с 1% до 21%.
2. Количество углекислого газа уменьшилось с 10% до 0,03% (углерод использовался на синтез органических веществ).
3. Нарушение гидробиологического режима. Резкое уменьшение содержания воды в биосфере.
Ксероморфогенез – основной путь эволюции.
Слайд 32
![Метаболизм органических кислот по типу толстянковых Растения, осуществляющие метаболизм по](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-31.jpg)
Метаболизм органических кислот по типу толстянковых
Растения, осуществляющие метаболизм по типу толстянковых,
являются суккулентами. Большинство принадлежат к сем.Crassulaceae, отсюда САМ-метаболизм. Представители: колланхое, седум и др.
Слайд 33
![САМ-метаболизм Данные растения адаптировались к дефициту воды на биохимическом уровне.](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-32.jpg)
САМ-метаболизм
Данные растения адаптировались к дефициту воды на биохимическом уровне. Днем устьица
у этих растений закрываются, чтобы снизить потерю воды. Ночью у них устьица открываются.
Следовательно, СО2 может проникать в ткани только ночью и накапливаться в виде органических кислот.
Слайд 34
![САМ-метаболизм](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-33.jpg)
Слайд 35
![Сущность САМ-метаболизма 1. САМ-фотосинтез осуществляет разделение ассимиляции СО2 и цикла](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-34.jpg)
Сущность САМ-метаболизма
1. САМ-фотосинтез осуществляет разделение ассимиляции СО2 и цикла Кальвина не
в пространстве, а во времени.
2. Первичная фиксация СО2 осуществляется в темноте, где ФЕП-карбоксилаза присоединяет его к ФЕПу.
3. Днем устьица закрыты (предотвращение потери воды), и проникновение СО2 невозможно. Малат служит источником эндогенного СО2 (декарбоксилирование).
4. Образовавшийся СО2 диффундирует в хлоропласты и включается в цикл Кальвина.
Слайд 36
![Сравнительная характеристика основных показателей С3-, С4- и САМ-растений](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-35.jpg)
Сравнительная характеристика основных показателей С3-, С4- и САМ-растений
Слайд 37
![Фотоокисление воды До 1931 года доминировала формальдегидная гипотеза происхождения кислорода.](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-36.jpg)
Фотоокисление воды
До 1931 года доминировала формальдегидная гипотеза происхождения кислорода.
СО2 С +
О2
С + Н2О СН2О
То есть, кислород образовывался по формальдегидной гипотезе из углекислого газа.
Слайд 38
![Происхождение кислорода Ван-Ниль в 1931 году предположил, что кислород образуется](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-37.jpg)
Происхождение кислорода
Ван-Ниль в 1931 году предположил, что кислород образуется из воды.
СО2
+ Н218О СН2О + 18О2
18О – изотоп кислорода.
С помощью изотопа кислорода 18О была доказана справедливость этого утверждения.
Слайд 39
![Механизм выделения кислорода Согласно Кутюрину (1968), молекула кислорода образуется из](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-38.jpg)
Механизм выделения кислорода
Согласно Кутюрину (1968), молекула кислорода образуется из воды, в
окислении которой участвует непосредственно хлорофилл.
Современная гипотеза предполагает участие марганец-содержащего фермента в окислении воды и формировании молекулы кислорода.
Слайд 40
![Механизм выделения кислорода Mn-содержащий ферментный комплекс](/_ipx/f_webp&q_80&fit_contain&s_1440x1080/imagesDir/jpg/290375/slide-39.jpg)
Механизм выделения кислорода
Mn-содержащий ферментный комплекс